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原代細(xì)胞的培養(yǎng)
原代細(xì)胞的培養(yǎng)是指直接從機(jī)體取下細(xì)胞、組織和器官后立即進(jìn)行培養(yǎng)。因此,較為嚴(yán)格地說(shuō)是指成功傳代之前的培養(yǎng),此時(shí)的細(xì)胞保持原有細(xì)胞的基本性質(zhì),如果是正常細(xì)胞,仍然保留二倍體數(shù)。但實(shí)際上,通常把di一代至第十代以內(nèi)的培養(yǎng)細(xì)胞統(tǒng)稱為原代細(xì)胞培養(yǎng)。 [1] 常用的原代細(xì)胞的培養(yǎng)有組織塊培養(yǎng)和分散細(xì)胞培養(yǎng)。組織塊培養(yǎng)是將剪碎的組織塊直接移植在培養(yǎng)瓶壁上,加入培養(yǎng)基后進(jìn)行培養(yǎng)。分散細(xì)胞培養(yǎng)大致步驟為:將動(dòng)物組織從機(jī)體中取出離散成單個(gè)細(xì)胞(常用胰蛋白酶),置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng),使細(xì)胞得以生存、生長(zhǎng)和繁殖(注意整個(gè)過(guò)程無(wú)菌)。
原代培養(yǎng)是直接從生物體獲取細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。由于細(xì)胞剛剛從活體組織分離出來(lái),故更接近于生物體內(nèi)的生活狀態(tài)。這一方法可為研究生物體細(xì)胞的生長(zhǎng)、代謝、繁殖提供有力的手段,同時(shí)也為以后傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件。利用此方法還可直接服務(wù)于臨床實(shí)踐。例如,用從手術(shù)中切除的腫瘤細(xì)胞進(jìn)行原代培養(yǎng),然后用該培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行抗癌藥物的篩選,根據(jù)腫瘤細(xì)胞對(duì)加入的化療藥物的敏感性來(lái)幫助選擇有效的化療方案,有可能起到增強(qiáng)療效、降低副作用的作用。

原代細(xì)胞的復(fù)蘇
1.取出細(xì)胞,迅速放入37℃溫水中快速解凍。
2.吸出細(xì)胞懸液,并加10倍以上培養(yǎng)液。
3.用培養(yǎng)液適當(dāng)稀釋后接種培養(yǎng)瓶,放入37℃ CO2 培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。
原代細(xì)胞的培養(yǎng)其實(shí)與細(xì)胞系的培養(yǎng)無(wú)多大差別,針對(duì)不同的細(xì)胞會(huì)選擇不同的細(xì)胞培養(yǎng)液。
1.培養(yǎng)液選擇
根據(jù)不同的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn) 要求進(jìn)行培養(yǎng)液的選擇,常用的L/H DMEM, F12 DMEM, RPMI 1640。
加液:培養(yǎng)液不能浸沒(méi)組織塊,避免組織漂浮。然后培養(yǎng)4h左右加培養(yǎng)液,培養(yǎng)48h后換液。
a.培養(yǎng)時(shí)間
無(wú)論是酶消化法還是組織塊法,取樣后培養(yǎng)時(shí)間最少需要一周以 上的時(shí)間,期間可換液或者傳代。
b.換液時(shí)間
無(wú)論酶消化法還是組織塊法,在培養(yǎng)期間需要隨時(shí)關(guān)注細(xì)胞的生長(zhǎng)狀況,需觀察其是否貼壁,是否污染,組織塊法要觀察是否有細(xì)胞遷移出來(lái)。正常情況下48~72h可換液一次。
2.細(xì)胞狀態(tài)判斷
正常貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)幾天后,會(huì)逐漸貼滿整個(gè)瓶底或者皿底,有的呈纖維狀,有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代
原代細(xì)胞的傳代、保存
傳一代后的細(xì)胞(也可以不傳代直接凍存)培養(yǎng)至80%~90%便可凍存起來(lái)供后續(xù)實(shí)驗(yàn)用。
凍存液配制:不同的細(xì)胞可能會(huì)有不同的凍存液配制方案,各實(shí)驗(yàn)室也有自己的凍存方案,常見(jiàn)的方案有:
A: 10%DMSO+90%FBS
B: 10%DMSO+40%FBS+50DMEM
C: 5%DMS0+45%DMEM+50%FBS
按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→超低溫冰箱(-80℃ 過(guò)夜)→液氮。
D:無(wú)血清凍存液
傳代:依椐細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài),生長(zhǎng)的細(xì)胞1:2或1:3進(jìn)行傳代。
細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程無(wú)菌操作
正常的復(fù)蘇,換液和傳代操作,最后將培養(yǎng)好的細(xì)胞進(jìn)行相應(yīng)的實(shí)驗(yàn)即可
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